參考周期：常規(guī)試驗7-15工作日，加急試驗5個工作日。

注意：因業(yè)務(wù)調(diào)整,暫不接受個人委托測試,望諒解(高校、研究所等性質(zhì)的個人除外)。

一、Real time PCR實驗 注意事項：

　　1. 實驗材料的處理和準(zhǔn)備

　　在第一講 RNA 抽提中已經(jīng)講過一些，還需要注意的是， 以最基本的基因表達(dá)差異分析為例，實驗材料分為對照組(CON)和處理組(TRT)。組內(nèi)要有復(fù)孔，要有生物重復(fù)，這樣可以統(tǒng)計分析此處理是否有統(tǒng)計學(xué)意義。

　　2. 引物設(shè)計

　　一般Real-Time PCR 引物的設(shè)計遵循下面一些原則：

　　擴(kuò)增產(chǎn)物長度在 80-150bp。

　　引物應(yīng)用核酸系列保守區(qū)內(nèi)設(shè)計并具有特異性。

　　產(chǎn)物不能形成二級結(jié)構(gòu)。

　　產(chǎn)物長度一般在 15-30 堿基之間。

　　G+C 含量在 40%-60%之間。

　　堿基要隨機(jī)分布。

　　引物自身不能有連續(xù) 4 個堿基的互補(bǔ)。

　　引物之間不能有連續(xù) 4 個堿基的互補(bǔ)。

　　引物 5’端可以修飾。

　　引物 3’端不可修飾。

　　引物 3’端要避開密碼子的第 3 位.

　　Taqman 探針的設(shè)計稍有不同，遵循以下原則：

　　盡量靠在上游引物;

　　長度 30-45bp，Tm 比引物高至少 5℃;

　　5’端不要是 G，G 會有淬滅作用，影響定

　　3. 常用的相對定量數(shù)據(jù)分析方法有：

　　雙標(biāo)曲線法、ΔCt 法、2‐ΔΔCt法(Livak法 )、用參照基因的ΔCt 法。

　　雙標(biāo)曲線法：每次實驗都分別用標(biāo)準(zhǔn)品做內(nèi)參基因和目的基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線， 并同時擴(kuò)增各待測樣本中的目的基因和內(nèi)參基因。然后使用標(biāo)準(zhǔn)曲線來計算待測樣本中的目的基因和內(nèi)參基因的表達(dá)量。最后使用如下公式得出目的基因表達(dá)差異。

　　ΔCt 法：不用內(nèi)參基因作為標(biāo)準(zhǔn)， 實驗設(shè)計簡單，數(shù)據(jù)分析處理簡單。 需要準(zhǔn)確量化初始材料(如細(xì)胞數(shù)目或核酸微克數(shù))，擴(kuò)增效率為 100%。計算公式如下：

　　2‐ΔCt=2‐(實驗組 Ct‐對照組 Ct)

　　2‐ΔΔCt法：這是最常用的進(jìn)行相對基因表達(dá)分析的方法，得到的結(jié)果是實驗組中目的基因相對于對照組中目的基因表達(dá)的差異倍數(shù)。要求目的基因和內(nèi)參基因的擴(kuò)增效率都接近 100%，且相對偏差不超過 5%。計算公式如下：

　　首先用內(nèi)參基因的 Ct 值對實驗組(test)和對照組 (con)的靶基因 Ct 值進(jìn)行歸一化：

　　ΔCt test=實驗組目的基因 Ct 值-實驗組內(nèi)參基因 Ct 值

　　ΔCt con=實驗組目的基因 Ct 值-實驗組內(nèi)參基因 Ct 值

　　隨后用對照組的Ct值歸一實驗組的ΔCt：

　　ΔΔCt=ΔCt test-ΔCt con

　　最后計算表達(dá)水平的差異倍數(shù)：

　　Change Fold=2‐ΔΔCt

　　用參照基因的ΔCt 法：這個方法的使用前提與2‐ΔΔCt法相同。計算方法如下：

　　對照組表達(dá)=2(對照組內(nèi)參 Ct‐對照組目的基因 Ct)

　　實驗組表達(dá)=2(實驗組內(nèi)參 Ct‐實驗組目的基因 Ct)

　　這種方法得到的對照組表達(dá)水平不是 1.0，但如果將得到的兩個表達(dá)值都除以對照組表達(dá)值，則得到：

　　對照組 Ratio=1

　　實驗組 Ratio

　　=2(實驗組內(nèi)參 Ct‐實驗組目的基因 Ct)/ 2(對照組內(nèi)參 Ct‐對照組目的基因 Ct)

　　=2‐[(實驗組目的基因 Ct‐實驗組內(nèi)參基因 Ct)‐ (對照組目的基因 Ct‐對照組內(nèi)參基因 Ct)]

　　=2‐(ΔCt test‐ΔCt con)

　　=2‐ΔΔCt

　　得到的比值與2‐ΔΔCt法是相同的，因此用參照基因的ΔCt 法是2‐ΔΔCt的一種變化形式。

PCR、western blot、ELISA的取舍?

　　PCR：檢測的是mRNA，在一些特定情況下mRNA變化不等同于蛋白變化，如蛋白降解等。此外，某些mRNA是一定可以翻譯成蛋白的，如miRNA、lncRNA、circRNA等，這種情況只能選擇PCR檢測RNA。此外，一些通路蛋白，如p65、β-catenin等，有較多轉(zhuǎn)錄后修飾方式，如磷酸化，這種發(fā)生于蛋白層面的變化PCR也是無能為力的。

　　推薦應(yīng)用：臨床組織、動物組織標(biāo)本的mRNA、lncRNA、circRNA、miRNA檢測。

　　western blot：檢測蛋白表達(dá)或轉(zhuǎn)錄后修飾(磷酸化、剪切體、甲基化、蘇素化、泛素化、乙?；?、多聚體、降解等)，與其他實驗技術(shù)結(jié)合可以達(dá)到多種目的。應(yīng)用最為廣泛。細(xì)胞和組織都可以應(yīng)用，也可以通過提取不同亞細(xì)胞組成用于檢測蛋白的定位情況。為半定量實驗。

　　推薦應(yīng)用：細(xì)胞或組織中通路蛋白、一般蛋白的表達(dá)或轉(zhuǎn)錄后修飾。

　　ELISA：為定量實驗，主要用于分泌型蛋白的檢測居多。也可以用于動物血清、組織、細(xì)胞上清的蛋白檢測。但是不適用于蛋白轉(zhuǎn)錄后修飾的檢測，不推薦通路相關(guān)蛋白的檢測。

　　推薦應(yīng)用：細(xì)胞上清、組織、動物血清中分泌型蛋白，如細(xì)胞因子的檢測。

中析儀器 資質(zhì)